CST的抗体能做免疫抗体检查细胞化学吗?怎么所有实验缩写注释里都没有这一项?

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cell signaling technology(CST)常见问题回答
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一、材料和试剂1、玻片:须用免疫组化专用玻片,或用2%多聚赖氨酸包被处理玻片。2、5-10%正常山羊血清封闭液,用PBS配。3、3%牛血清白蛋白(BSA),用PBS配。4、0.01M
PBS5、1% BSA-PBS(含0.05% Tween20)6、AEC底物(1)底物缓冲液(20X) PH 4.6醋酸(分子量60.6)
30.6mlTriton X-100醋酸钠 3H2O(分子量136.1)66.68克加蒸馏水到960ml,调pH到4.6,最后加蒸馏水到总体积1000ml。(2)AEC(20X)AEC
15mg/ml,溶在DMF(二甲基甲酰胺,分子式HCOH(CH3)2 分子量73.10中)(3)0.6% H2O2(20X)临用时,(1)(2)(3)各50ul,在1ml双蒸馏水中混匀30分钟内有效。7、DAB(即DAB-4HCL)(1)1.5克DAB在100ml水溶液中(20X)(2)1M Tris(20X),用HCl调PH到7.4(1)(2)(3)各滴加入1ml二蒸水中,新鲜配,避光,30分钟内有效。溶解后(可加热到50℃),加水合氯醛50克(水合氯醛Chloral Hyclrate,分子量165.4),枸橼酸1克,充分溶解,于棕色瓶中,室温或400C保存。8、苏木素复染液苏木素
1000ml9、含10%及2%小牛血清的DMEM培养液。10、3% H2O2:30% H2O21份,加9份双蒸水,临用时配。11、细胞抗原玻片及96孔细胞抗原板12、封片液:1克明胶,溶于30ml 35℃水中,加入35ml甘油(或用甘油封片)和650mg石碳酸(先溶于0.6ml水中)。二、细胞内源过氧化物酶阻断(使用HRP标记二抗或SP法时必须阻断)1、从冰箱取出细胞片或细胞板,置室温或37℃ 10-15分钟,使恢复温度。2、加3% H2O2,细胞片20ul/孔,培养板100ul/孔,使充分覆盖住细胞。3、室温10分钟后,甩掉 H2O2,用PBS轻轻淋洗2分钟。用滤纸吸干细胞周围水份,96孔在滤水纸上扣干,但注意保持细胞湿润。三、封闭细胞片用5-10%正常山羊血清(20ml/孔),细胞板用2-5%BSA(PBS配制)100ul/孔,置37℃孵育30分钟后甩掉封闭液,不洗。四、免疫化学染色1、分别加一抗和所有对照一抗,细胞法10-20ul/孔,细胞板50ul/孔,使充分覆盖细胞。37℃1小时或4℃冰箱过夜;2、弃去一抗,如为细胞涂片用PBST轻轻简单淋洗1次后,浸于100 mL含PBST洗杯,漂洗(最好在慢速摇床上)3-5分钟,转入第二杯PBS(100 ml),如上法漂洗3-5分钟。擦干细胞片周围水分,96孔板则倒掉一抗后,每孔加满PBST在摇床上摇洗3-5分钟后倒掉,在滤纸上扣干,但保持细胞湿润,反复3-4次;3、加SP试剂(SP法,即放大法)(1)加已优选好的浓度的Biotin标记二抗,细胞片10ul/孔,细胞板50ul/孔,使充分复盖细胞。37℃孵育30分钟;(2)按免疫化学染色“2”所述方法洗涤和擦干;(3)加已优选好浓度的SP试剂,用量同“(1)”,37℃孵育30分钟后按免疫化学染色“2”法洗涤及擦干;4、间接法加二抗(不放大法)方法同SP法,但不用Biotin标记二抗,而改用HRP直接标记二抗。并省略(3)步骤;5、加底物显色(1)加足量的AEC显色液,充分覆盖细胞层,细胞玻片20ul/孔,细胞培养板50ul/孔,置于37℃恒温箱孵育5-10分钟,一般在显微镜下根据结果颜色的呈现情况掌握染色时间,以得到满意的结果(阳性对照显色程度为“+++” ),用自来水即可终止反应;(2)复染:苏木素染液(使用时间最好不超过两个月)加苏木素复染液1-2滴,1分钟左右,在自来水龙头下轻轻冲洗掉苏木素,再浸于PBS中约30秒钟返蓝,最后在蒸馏水中漂洗。6、封片洗后细胞片擦去周围水分,滴加1滴甘油—明胶封片液,加盖玻片,除去气泡,用指甲油或树胶封固玻片。五、结果判断阳性——诱导细胞有10%-30%显红色,强度不一,未诱导阳性细胞(1-30%);阴性——诱导和未诱导BCBL-1细胞完全不显色(排除边缘效应)六、注意事项1、一抗、二抗的稀释采用1% BSA/PBS,Sterptavidin-HRP的稀释采用PBS;2、整个反应过程在湿盒中进行(细胞片);3、洗涤时应使用染色缸(细胞片);4、对照系统,必须要做的对照系统:阳性对照:标准一抗,阳性血清,阳性上清;阴性对照:(1)阴性一抗对照:小鼠免疫前血清、测上清时用原克隆上清液;(2)阴性抗原细胞对照:未感染病毒的细胞,每个待测及对照均须做阴性细胞对照:空白对照:不加一抗,用1%BSA替代;无关对照:与本项目无的第一抗体。
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标题: 关于Brdu标记细胞增殖实验(细胞增殖,单克隆抗体,实验步骤,细胞免疫荧光)
摘要: [关于Brdu标记细胞增殖实验(细胞增殖,单克隆抗体,实验步骤,细胞免疫荧光)] 各位大侠: 小弟最近才开始做用brdu标记检测细胞增殖的实验,买的是CST的抗brdu的单克隆抗体,所有的操作都按照CST官方网站提供的细胞免疫荧光实验步骤。可是我做出来的结果却是基本上每个细胞都着色了(brdu标记2小时),理论上这是不可能的呀,不知道是怎么回事,非常纠结,请各位高手指点啊!多谢! 下图是我做的结果。 关键词:[细胞增殖 单克隆抗体 细胞免疫荧光 实验步骤]……
各位大侠: 小弟最近才开始做用brdu标记检测细胞增殖的实验,买的是CST的抗brdu的单克隆,所有的操作都按照CST官方网站提供的细胞免疫荧光实验步骤。可是我做出来的结果却是基本上每个细胞都着色了(brdu标记2小时),理论上这是不可能的呀,不知道是怎么回事,非常纠结,请各位高手指点啊!多谢! 下图是我做的结果。
回复LZ是染的cell line吗?单从这张图片应该不能说明每个细胞都染上了啊。建议和核染图片merge,用共定位才好确认BrdU/total 的 %。如果是cell line的话,个人认为高的增殖率理论上是可以解释的。回复同意“thanks4share”朋友观点。回复看了楼上的回复,茅塞顿开!多谢!回复1、建议核染,确认染色成功;2、测试对照,即不加BrdU,只加一抗,的结果;3、更换EdU方法试一试,确认BrdU方法有效性。从你的结果来看,确认像特异性染色,不过还是证实一下比较好。要像下图这样,才能说明增殖。B1: B2: /sitecn/Product.aspx?id=92回复发重复了回复这是我用DAPI染的图片,能帮忙分析一下吗?回复有同一视野标记荧光和DAPI两个通道的荧光照片吗?两张照片重叠了才能比较回复这是重叠图片,劳驾分析一下,谢谢~回复我觉得 95%可能是背景
非特异性染色回复这是重叠图片,劳驾分析一下,谢谢~回复这是我染的图片,大家有兴趣的帮忙看一下~回复这个图
好像还好,有深有浅,但仔细一看
全染色了难道全增殖了?这个需要你说明一下?
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 原位杂交组织化学与免疫细胞化学结合法
 原位杂交组织化学与免疫细胞化学结合法
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第四节 原位杂交组织化学与免疫细胞化学结合法
原位杂交组化(ISHH)与免疫组织化学(IHC)结合法是先后用ISHH和IHC在同一切片或两个相邻切片进行染色,这样就可以同一细胞中显示出某种mRNA和相应的蛋白、多肽或其它抗原,从而可更好地了解某一基因的转录和蛋白、多肽合成的动力学。ISHH与IHC结合法可以在相邻切片上分别进行ISHH和IHC染色,也可先后在同一切片上进行ISHH和IHC染色。前者可使ISHH和IHC染色都获得理想的结果,易成功,但易产生空间误差和样本误差。在同一切片上进行结合法可克服这些误差,但第一次染色总要或多或少地影响第二次染色,使第二次染色不十分理想。由于m RNA易被染色过程中污染有少量RNase的液体所降解,因而在实践中往往首先进行原位杂交组化染色,这种次序使结合法易成功。但在操作方法中应注意减少生物活性肽或蛋白的丢失,如在杂交后冲洗中适当减低漂洗温度。
一、同位素原位杂交组化与免疫组化PAP法的联合程序
(1)切片入PBS冲洗5min,最好是将切片漂洗于灭菌器皿中。
(2)0.1mol/L 甘氨酸PBs 5min。
(3)0.4%Triton X-100 PBS 15min。
(4)1μg/ml蛋白酶K,37℃保温30min。
(5)4%多聚甲醛PBS固定5min 。
(6)PBS冲洗2×3min。
(7)0.25%乙酸酐(0.1mol/L 三乙醇胺配)10min。
(8)2×SSC冲洗10min。
  (9)杂交:如是cDNA探针用前需进行变性处理,载片法时将切片在空气中晾干,加含探针的杂交液10μl于切片上,盖上22×22mm的硅化盖片或相当大小看蜡膜,
H标记探针每10μl杂交液含1×10
S标记探针每10μl杂交液含5×10
cpm探针;如是漂浮切片,则用灭菌吸水纸将切片水份尽量吸干,然后入杂交液,探针浓度和载片法一样。入杂交液后43℃保温12~16h。
(10)4×SSc 37℃冲洗10~30min。
(11)2×SSC(如为RNA探针则含20μg/ml RNase)37℃冲洗30min。
(12)1×SSC和0.1×SSc 37℃分别冲洗30min。
(13)PBS冲洗2×5min。(转录ISHH)
  (14)0.5%H
PBS室温30min。
(15)1%BSA 37℃,30min 。
(16)第一抗体,4℃孵育16~24h。
(17)PBS冲洗4×5min。
(18)第二抗体37℃,1h。
(19)PBS冲洗3×5min。
(20)兔PAp 37℃,1h 。
(21)PBS冲洗3×5min。
  (22)DAB显色液5~10min(DAB显色液:0.05%DAB + 0.03% H
PBS液配)。
(23)PBS冲洗3×5min。如是漂浮切片则将其贴于涂有粘附剂的载片上,晾干。
(24)切片入70%,85%,95%和2个100%酒精脱水,空气干燥。
(25)在暗室涂布乳胶(乳胶配制:乳胶原液:0.6mol/L醋酸胺=1:1),晾干,装入自显影暗盒。
  (26)4℃曝光:
H标记探针4~8周,
S标记探针1~4周,
P标记探针7~10天。
  (27)D
显影液,20℃显影5~10min。
(28)自来水冲洗数秒。
  (29)F
坚膜定影液10min。
(30)自来水冲洗15min。
(31)切片温箱烤干,脱水,透明,封片。
结果:蛋白或多肽免疫反应阳性细胞为棕色胞质,而其相应mRNA为黑色银颗粒聚集。
二、非同位素原位杂交组化与免疫组化联合法
非同位素标记物很多例如:生物素(biotin),地高辛(Digoxigenin),汞(mercury),溴(bromine)和碱性磷酸酶等,其中目前应用最多的是生物素和地高辛。将此法与免疫组化PAP法或ABC法联合使用,能成功地显示一些神经肽mRNA和神经肽的共存与共同分布。向正华等发现碱性磷酸酶抗地高辛抗体是经木瓜蛋白酶处理的,只有抗体的Fab段没有Fc段,而免疫细胞化学(Immunocytochemistry,ICC)所应用的抗体既有Fab段,又有Fc段。由于抗体的这一特性可在ISHH和ICC抗体孵育时将检测核酸的抗地高辛抗体Fab段与检测蛋白、多肽的兔抗血清混合在一起,一同孵育切片,这样可明显缩短ISHH和ICC结合法的实验周期,同时还可以减少实验过程中对ICC检测的蛋白、多肽的损害,使结合法易成功。为什么两种抗体可同时混合孵育切片,这是因为抗地高辛抗体只有Fab段,而没有Fc段。我们知道抗体的抗原决定簇在Fc段,因此第二抗体与第一抗体的结合是第二抗体的Fab与第一抗体的Fc,所以第一抗体如果只有Fab段没有Fc段,那么第二抗体就无法与一抗结合。因此实验中将二种抗体混合孵育切片而不会产生交叉结合。以下为此法的原理图(图20-5)。
图20-5 原位杂交细胞化学与免疫细胞化学结合法
此种ISHH与ICC联合法稳定,实验周期短,蓝色与棕色反差强,是目前较好的ISHH与ICC结合法。详细程序如下:
(1)将切片漂浮于能经受高压灭菌的器皿中。0.1mol/l PBS pH7.2冲洗3×5min。
(2)0.1mol/L甘氨酸PBS冲洗5min。
(3)0.4% Triton X-100 PBS 15min。
(4)1μg./ml蛋白酶K(0.1mol/l Tris ?HCl pH8.0, 50mmol/L EDTA 配),37℃保温30min。
(5)4%多聚甲醛PBs 5min。
(6)PBS冲洗2×min。
(7)0.25%乙酸酐(0.1mol/L三乙醇胺配)10min。
(8)2×SSC冲洗10min。
(9)将切片用灭菌吸水纸吸干,然后入杂交液。核酸探针浓度为0.25~0.5μg./ml。每一正常成年大鼠脑冠状切片15μl杂交液足够。43℃保温12~16h。
(10)4×SSc 37℃冲洗30min。
(11)2×SSC(含RNasea 20μg/ml)37℃保温30min。
(12)1×SSC和0.5×SSc 37℃分别冲洗30min。
(13)0.05mol/l PBS冲洗3×5min。
  (14)0.5%H
PBS室温20min。
(15)0.05mol/l PBS 冲洗2×5min。
(16)碱性磷酸酶标记抗地高辛抗体(Fab)与抗蛋白或多肽等抗体混合液,前者一般1:1000稀释,后者则因抗体而异。稀释液:1%BSA,0.4%Triton X-100 ,0.05mol/L PBS pH7.2,4℃孵育24h。
(17)0.05mol/l PBS冲洗4×5min。
(18)二抗(1:100~1:200)37℃保温1h。
(19)0.05mol/l PBS冲洗3×5min。
(20)PAP(1:200~1:400)37℃保温1h。
(21)0.05mol/l PBS冲洗3×5min。
  (22)DAB显色液(0.05%DAB + 0.03% H
,0.05mol/L PBS pH7.2配)显色5~10min。
(23)0.05mol/l PBS冲洗3×5min。
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