cona 影响 t cd25 t细胞比例例吗

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【交流】conA活化naiveT细胞为什么不需要双信号!以及细胞因子能否直接活化naiveT细胞。
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最近看文献,有了一些问题,1.一般说来T细胞活化需要三个信号,及TCR-CD3信号(特异性),CD28信号(共刺激信号),以及细胞因子信号(决定亚型),但是为什么conA能够直接活化naiveT细胞活化增殖呢?活化后的T细胞属于哪种类型(Th1?Th2?其他?还是都有?)2.还有一个问题就是细胞因子能否直接活化刺激T细胞,查了文献发现他们研究细胞因子的作用都是添加了conA或者是anti-CD3和anti-CD8的前提下,再加入细胞因子,暂时没有找到细胞因子单独直接对naiveT细胞的作用的数据。希望高手解答,万分感谢!
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conA是丝裂原,属于超抗原的一种,因为T细胞上有丝裂原受体,所以与conA结合后,能直接使T细胞发生活化、增殖和分化。这种活化方式完全不同于经典的T细胞活化方式,其真正的分子机制还没有完全明确。 经典的T细胞活化需要双信号与细胞因子的辅助作用,就目前所知细胞因子应该不可以直接使T细胞活化,但其在T细胞的增殖和分化中具有重要的作用。所以体外研究细胞因子对T细胞活化的作用,必须加入你看文献时提到的几种物质来提供活化信号。
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maocai 最近看文献,有了一些问题,1.一般说来T细胞活化需要三个信号,及TCR-CD3信号(特异性),CD28信号(共刺激信号),以及细胞因子信号(决定亚型),但是为什么conA能够直接活化naiveT细胞活化增殖呢?活化后的T细胞属于哪种类型(Th1?Th2?其他?还是都有?)2.还有一个问题就是细胞因子能否直接活化刺激T细胞,查了文献发现他们研究细胞因子的作用都是添加了conA或者是anti-CD3和anti-CD8的前提下,再加入细胞因子,暂时没有找到细胞因子单独直接对naiveT细胞的作用的数据。希望高手解答,万分感谢!1.可以看看ConA所刺激的原理。由这类超抗原活化的细胞类型不太能确定,一般会分析在此种抗原刺激下,CD4,CD8如何如何之类的,但是所形成的是一个群体。2.以活化来讲,细胞因子当然会活化T细胞,而且如果是研究细胞因子的话,会把readout设定为T细胞的效应功能,指细胞分裂,分泌细胞因子,细胞在体内迁移,ADCC等等。也就是说在单纯研究细胞因子的条件下,更多的或是更合理的实验条件应该是特异性抗原加上细胞因子刺激。你提到的在anti-CD3,CD-8(应该是CD28吧?)下加细胞因子,更多是研究T细胞的分化能力。
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maocai 最近看文献,有了一些问题,1.一般说来T细胞活化需要三个信号,及TCR-CD3信号(特异性),CD28信号(共刺激信号),以及细胞因子信号(决定亚型),但是为什么conA能够直接活化naiveT细胞活化增殖呢?活化后的T细胞属于哪种类型(Th1?Th2?其他?还是都有?)2.还有一个问题就是细胞因子能否直接活化刺激T细胞,查了文献发现他们研究细胞因子的作用都是添加了conA或者是anti-CD3和anti-CD8的前提下,再加入细胞因子,暂时没有找到细胞因子单独直接对naiveT细胞的作用的数据。希望高手解答,万分感谢!1:conA本身特异性不好,首先体现在细胞种类上,tcr的一般只在t细胞里有。所以拿cd3+28刺激其他的细胞其实效果很差。而conA除了t细胞以外还可以刺激其他类型的细胞。其次体现在信号通路上,cd3+28特异性的激活特定信号通路。conA则是和糖蛋白上的结构单元结合,因而有这个结构单元的蛋白都能和conA结合。所以其实conA在细胞膜上的受体很多。因而实际上它基本上可以同时激活多种亚型的t细胞增殖。并无特异性的针对某些亚群。
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hbezyr 1.可以看看ConA所刺激的原理。由这类超抗原活化的细胞类型不太能确定,一般会分析在此种抗原刺激下,CD4,CD8如何如何之类的,但是所形成的是一个群体。2.以活化来讲,细胞因子当然会活化T细胞,而且如果是研究细胞因子的话,会把readout设定为T细胞的效应功能,指细胞分裂,分泌细胞因子,细胞在体内迁移,ADCC等等。也就是说在单纯研究细胞因子的条件下,更多的或是更合理的实验条件应该是特异性抗原加上细胞因子刺激。你提到的在anti-CD3,CD-8(应该是CD28吧?)下加细胞因子,更多是研究T细胞的分化能力。谢谢你的回答,是anti-CD28,写错了,不好意思。1.按你的意思来说的话,T细胞活化不一定需要双信号刺激才能活化喽,另一方面来讲conA活化的T细胞是非特异的。2.我想找的答案是单独加细胞因子是否能促进T细胞像某种类型分化增值,比如IL-6直接和naiveT细胞共培养能否诱导分化增值成Th2。比如我要证明某类细胞(非专职APC)也能够直接诱导naiveT细胞分化,但是要考虑到细胞因子的影响,此类细胞是分泌细胞因子才导致naiveT细胞分化,还是相互接触后导致的分化,所以想确定细胞因子能否直接诱导naiveT细胞分化。
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reyesa 1:conA本身特异性不好,首先体现在细胞种类上,tcr的一般只在t细胞里有。所以拿cd3+28刺激其他的细胞其实效果很差。而conA除了t细胞以外还可以刺激其他类型的细胞。其次体现在信号通路上,cd3+28特异性的激活特定信号通路。conA则是和糖蛋白上的结构单元结合,因而有这个结构单元的蛋白都能和conA结合。所以其实conA在细胞膜上的受体很多。因而实际上它基本上可以同时激活多种亚型的t细胞增殖。并无特异性的针对某些亚群。也十分感谢你的回答,谢谢!
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maocai 谢谢你的回答,是anti-CD28,写错了,不好意思。1.按你的意思来说的话,T细胞活化不一定需要双信号刺激才能活化喽,另一方面来讲conA活化的T细胞是非特异的。2.我想找的答案是单独加细胞因子是否能促进T细胞像某种类型分化增值,比如IL-6直接和naiveT细胞共培养能否诱导分化增值成Th2。比如我要证明某类细胞(非专职APC)也能够直接诱导naiveT细胞分化,但是要考虑到细胞因子的影响,此类细胞是分泌细胞因子才导致naiveT细胞分化,还是相互接触后导致的分化,所以想确定细胞因子能否直接诱导naiveT细胞分化。1. 活化T细胞的标准是什么?是检测CD69的表达,还是看培养后的Population情况?是看分泌细胞因子,还是看细胞因子受体的表达?根据这里面的readout来讲,再谈活化。你说的双信号是对的,但是这只是在APC-Ag-T细胞时,简化了的模型,真正在实验中,看具体的情况。2.细胞的分化当然受到细胞因子的影响,这里的活化更多是讲effector了。就CD4 而言,其本身的可变性,决定了在不同系统中得到的亚型不一样。但是“我要证明某类细胞(非专职APC)也能够直接诱导naiveT细胞分化”,“此类细胞是分泌细胞因子才导致naiveT细胞分化,还是相互接触后导致的分化,”,一个简单的transwell实验可以得到结论。但是,单纯的细胞因子如果没有在TCR激活下,活化的程度不高.
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conA是丝裂原,属于超抗原的一种,因为T细胞上有丝裂原受体,所以与conA结合后,能直接使T细胞发生活化、增殖和分化。这种活化方式完全不同于经典的T细胞活化方式,其真正的分子机制还没有完全明确。 经典的T细胞活化需要双信号与细胞因子的辅助作用,就目前所知细胞因子应该不可以直接使T细胞活化,但其在T细胞的增殖和分化中具有重要的作用。所以体外研究细胞因子对T细胞活化的作用,必须加入你看文献时提到的几种物质来提供活化信号。
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经典的T细胞活化需要双信号与细胞因子的辅助作用,就目前所知细胞因子应该不可以直接使T细胞活化,但其在T细胞的增殖和分化中具有重要的作用。我想补充一点,现在的研究表明,单纯的细胞因子是可以直接使某一特殊亚群T细胞(如NKT, autoreactive T cells) 活化的, 所谓的standby pathway
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alishang edited on
alishang 我想补充一点,现在的研究表明,单纯的细胞因子是可以直接使某一特殊亚群T细胞(如NKT, autoreactive T cells) 活化的, 所谓的standby pathway谢谢你!
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看到本贴我也有一些问题想请教:在体外促naiveT细胞分化体系中有加DC,也有不加DC的,只是加细胞因子和双抗,比如为了促进向Th17分化,加IL-6、TGF-B,抗IL-4和IFN-R抗体。想请教两种方法的区别在哪里?分化出来细胞的纯度大概可以达到多少?有这相关的中文或外文文献可供参考吗?谢谢
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jqwhy 看到本贴我也有一些问题想请教:在体外促naiveT细胞分化体系中有加DC,也有不加DC的,只是加细胞因子和双抗,比如为了促进向Th17分化,加IL-6、TGF-B,抗IL-4和IFN-R抗体。想请教两种方法的区别在哪里?分化出来细胞的纯度大概可以达到多少?有这相关的中文或外文文献可供参考吗?谢谢 不同的实验室有不同的实验体系,但是都是为了回答各自的问题。可以根据自己的实验目的来选择实验体系。其中,加DC,更多是加被感染后的DC,或是被pulsed Ag的DC。这是为了做特异的Th.直接加细胞因子,更多是体外的纯化出Th分化的模型,是纯粹的机制工作。真正体内的情况如何,大家只能根据以上的结果,根据KO mice的情况,自己再去验证和解释临床出现的症状和探索相对应的解决方法。就我现在做的一个课题来讲,我是想看看某个自分泌的因子是否对某类T细胞的功能活化方面有加强的作用。那么,最合适的模型就是细胞因子直接体外诱导了。因为我这个细胞在mice中没有同源细胞,只能是在体外做相关的基因操纵了。那么在体外做时,为了结果好看,加上DC也不是不可以,只是我们实验室没有这个系统,因此只能放弃这个实验,改成全部在体外CK-induced下的活化研究。
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conA是非特异性的吧,相当于有丝分裂原吧。走的信号通路不一样。我觉得有可能是增殖的就是naive T cell。(这点不太确定,流式测一测就知道了嘛)单独的IL-2啥的,不可以使naive T分化。
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hbezyr 1.可以看看ConA所刺激的原理。由这类超抗原活化的细胞类型不太能确定,一般会分析在此种抗原刺激下,CD4,CD8如何如何之类的,但是所形成的是一个群体。2.以活化来讲,细胞因子当然会活化T细胞,而且如果是研究细胞因子的话,会把readout设定为T细胞的效应功能,指细胞分裂,分泌细胞因子,细胞在体内迁移,ADCC等等。也就是说在单纯研究细胞因子的条件下,更多的或是更合理的实验条件应该是特异性抗原加上细胞因子刺激。你提到的在anti-CD3,CD-8(应该是CD28吧?)下加细胞因子,更多是研究T细胞的分化能力。请教一下 你们一般用于刺激T细胞的ConA可有讲究 是sigma的哪个货号?谢谢
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1.青春期的男女生都有与异**往的欲望。下列对该行为的分析,不正确的是( )A.性激素对该行为影响很大B.神经系统对该行为的调节处于主导地位C.该行为会受环境条件影响D.抗体等免疫物质对该行为有影响
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神经—体液—免疫调节网络是机体维持稳态的主要调节机制,联系神经、内分泌、免疫三大系统之间的物质是( ) (1)神经递质(2)激素(3)免疫因子(4)抗体(5)酶(6)载体A.123456.B.1234.C.3456.D.123.
内分泌系统与神经、免疫系统的功能联系
自从 1928 年 Ernest Scharrer 发现硬骨鱼下丘脑的神经细胞具有内分泌细胞的特征,并最先提出 神经内分泌 ( neuroendocrine ) 概念后,启发了有关领域研究的新思路。随后众多 的 研究逐渐证实了神经系统与内分泌系统活动联系紧密。近二十余年 来 ,分子生物学技术以及免疫学的迅速发展,又促使人们发现神经、内分泌和免疫系统能够共享某些信息分子和受体,都通过类似的细胞信号转导途径发挥作用,这又使人们意识到机体还存在一个调节系统——免疫系统。 Besedovskyn 于 1977 年最先提出 神经 - 内分泌 - 免疫网络 ( neuroendocrine-immune network ) 的概念。三个系统各具独特功能,相互交联,优势互补,形成调节环路(图 1 )。这个网络通过感受内外环境的各种变化,加工、处理、储存和整合信息,共同维持内环境的稳态,保证机体生命活动正常运转。 图1 内分泌、神经和免疫系统的调节功能联系GH :生长激素; PRL :催乳素 一、神经 - 内分泌 - 免疫网络的物质基础
神经、内分泌和免疫三大调节系统以共有、共享的一些化学信号分子为通用语言进行经常性的信息交流,相互协调,构成整体性功能活动调制网络。内分泌、神经和免疫系统组织都存在共同的激素、神经递质、神经肽和细胞因子( cytokine ),而且细胞表面都分布有相应的受体。大部分在脑内发现的神经肽和激素同时也存在于外周免疫细胞中,而且结构和功能与神经 、 内分泌细胞的完全相同。再如,淋巴细胞和巨噬细胞等存在生长激素( GH )、促肾上腺皮质激素( ACTH )受体和内啡肽受体等,胸腺细胞也分布有生长激素释放激素( GHRH )、催乳素( PRL )等受体。利用组织化学、放射免疫自显影等技术证实,无论在基础状态下还是诱导后,脑组织中都存在多种细胞因子的受体或相应的 mRNA 。中枢神经系统也存在白介素和干扰素等细胞因子。在正常情况下,内分泌系统就存在一些细胞因子,而且经诱导后还可以产生许多细胞因子。 二、内分泌系统与神经系统的关系
下丘脑是神经内分泌活动的重要枢纽,与感觉 传 入和高级中枢下行通路间都有广泛的联系,途经的信息都有可能经下丘脑引起反应,如精神紧张可使皮质醇分泌增加,焦虑引起闭经,对生殖道的机械刺激可引起排卵等。集中分布在下丘脑的 神经分泌细胞 ( neurosecretory cells ) 更是直接受神经活动影响,将中枢活动的电信号转化为激素分泌的化学信号。下丘脑释放的神经肽可通过垂体门脉系统调节腺垂体的内分泌活动,腺垂体细胞也直接受神经的支配与调节。这些活动有助于在外环境变化时内分泌系统反应的高级整合,如 CRH - ACTH - 皮质醇轴在应激反应中的激活。
几乎所有内分泌腺都受自主神经支配。肾上腺髓质分泌直接受交感神经节前纤维的控制;甲状腺 、 胰岛以及胃肠内分泌细胞等的功能活动无不受自主神经支配调节。
激素也能影响中枢神经系统的功能,如行为、情绪、欲望等。广泛存在于中枢和周 围神经系统中的多种激素参与调制神经信息的传输,使神经调节更加精确和完善。如中枢神经系统内广泛分布的 TRH 参与如抗抑郁、促觉醒、促运动和升体温等活动的神经调节 ; 糖皮质激素对交感神经末梢释放去甲肾上腺素 引起的 缩血管效应 具有 允许作用。有些激素可调制突触传递, 如 血管紧张素 Ⅱ 可 促进交感神经末梢释放甲肾上腺素 以 加强血管收缩;前列腺素 E 2 和前列腺素 I 2 则起抑制作用,并降低血管平滑肌对甲肾上腺素和血管紧张素 Ⅱ 的敏感性。 三、内分泌与免疫系统的关系
早期实验发现,部分切除垂体可引起胸腺萎缩。大量实验都从不同角度提供了内分泌与免疫系统之间复杂关系的证据。免疫系统是机体应对细菌、病毒、肿瘤及其它抗原刺激发生反应的调节系统。在机体受到相应刺激时,激活细胞或体液中介的免疫反应,使免疫细胞分泌细胞因子和肽类激素等,并作用于下丘脑,影响下丘脑神经激素以及垂体激素的分泌。细胞因子也可直接刺激垂体、甲状腺、胰腺、肾上腺和性腺等,调节这些内分泌腺体的分泌活动。免疫细胞也能释放与下丘脑和垂体相同的肽类,如 ACTH 等同样能刺激肾上腺糖皮质激素的释放,参与应激发生时的负反馈调节效应,防止免疫反应过强。胸腺素 a 1 也能刺激垂体,提高 ACTH 和皮质醇的水平; 单核 - 巨噬细胞分泌的白介素 - 1 ( IL-1 )不仅能活化 T 淋巴细胞,还能刺激下丘脑 CRH 释放,进而使血液 ACTH 水平升高,维持皮质醇的高速分泌;刺激胰岛 B 细胞分泌胰岛素等。
激素可在不同水平直接或间接调制免疫功能。多数激素具有免疫抑制作用,能使淋巴细胞的增殖力减弱、减少抗体生成和抑制吞噬功能等,如生长抑素、 ACTH 、糖皮质激素、性激素、前列腺素等,都属于免疫抑制激素。但血液中少量的糖皮质激素却能刺激淋巴细胞增生以及抗体的合成等,而起到免疫增强作用。 TRH 刺激 T 细胞释放 TSH ,进而促使 B 淋巴细胞产生抗体。少数激素具有免疫增强作用,如生长激素、催产素、催乳素、甲状腺激素、 b - 内啡肽、 TRH 和 TSH 等促进淋巴细胞的增殖力,使抗体生成增加,还可使巨噬细胞活化,吞噬能力增强。特别是生长激素具有广泛的的免疫增强作用,几乎促进所有免疫细胞的分化,并增强它们的功能。因此,生长激素缺乏会导致机体免疫功能减退。
尽管基因敲除小鼠实验提示,许多激素在免疫调制中并非必需,但对细胞在应激刺激中的反应却有重要意义,其中也包括免疫系统。 四、神经系统与免疫系统的关系
Ader 等 在 1975 年发现,动物的免疫反应可形成条件反射,这是中枢神经系统作用于免疫系统的直接证据。如条件反射可延长患自身免疫性疾病小鼠的寿命。对于人,个性和情绪能改变免疫系统对疾病的易感性。焦虑、恐惧、孤独等不良心理刺激可造成机体免疫功能降低,这表明高级中枢对免疫功能的调节作用。相反,条件反射还可引起免疫增强的效应。中枢神经系统中的神经分泌细胞和胶质细胞能产生细胞因子和补体等免疫活性物质,在丘脑、下丘脑、海马、嗅球等许多脑区均发现免疫活性物质。
免疫器官都受自主神经支配。如支配胸腺的交感神经具有促进胸腺细胞发育、 T 细胞成熟等作用。实验表明,交感与副交感神经对免疫反应的调节 可 分别产生抑制性和增强性效应。
中枢神经不同脑区的损伤都可能影响免疫功能。如大面积损毁小鼠左侧大脑皮层后, T 细胞数量和反应性降低, NK 细胞活性降低,但对 B 细胞和巨噬细胞 则 无影响;右侧大脑皮层可能通过调节左侧大脑皮层的传出信号,起到相反的作用 , 表明大脑皮层对免疫反应 具有 整合作用。如损毁背侧海马或杏仁复合体可导致脾细胞和胸腺细胞数量一过性增加 和 刀豆球蛋白 A ( ConA )诱导的 T 细胞增殖反应增强。下丘脑不同部位的 毁 损对免疫功能影响也有差异,若为前部 毁损 可导致有核脾细胞和胸腺细胞数量减少, ConA 诱导的 T 细胞增殖反应下降以及 NK 细胞活性下降等;若为中部 毁损 可导致 T 、 B 淋巴细胞数量减少;若为后部 毁损则可 导致 T 辅助细胞 /T 抑制细胞比例的下降,还能增强肿瘤生长。损毁脑干不同部位对胸腺组织以及免疫反应 也 都有不同的影响。
免疫对神经系统的作用主要通过细胞因子实现。①免疫细胞产生的细胞因子等,在调节免疫系统自身功能的同时也调节神经内分泌系统的功能;②神经元存在细胞因子受体,如 IL-2 受体大量分布在海马、小脑、下丘脑和大脑皮质;③淋巴细胞可通过血 - 脑屏障,在中枢神经系统内发挥免疫监视作用。
神经 - 内分泌 - 免疫网络的正常运行对机体内环境稳态和免疫防御功能具有重要意义。三者之间的调节环路基本上可分长环反馈和短环反馈两种形式。长环反馈指免疫系统受到的刺激导致免疫源性介质释放,后者再作用远处的神经内分泌组织,并影响其功能。该环路中存在很多相关轴系,如下丘脑 - 垂体 - 肾 上腺(性腺,甲状腺) - 免疫系统轴等。已证实介导长环反馈环路相互作用的最重要的细胞因子为 IL-l 、 IL-6 等。短环反馈为局部的相互作用,是指免疫源性介质和神经内分泌因子在被释放的组织和器官内以旁分泌和自分泌 的 方式相互影响。
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  近期,中国中医科学院西苑医院肝病科研究人员发表论文,旨在探讨对(Con&A)诱导的急性小鼠及T的影响。研究指出,荣肝合剂对刀豆蛋白A所致转基因小鼠急性免疫性肝损伤具有降酶作用,同时对于肝组织有保护作用,可以减轻肝组织的炎症与坏死,其机理与调节T淋巴细胞亚群功能相关。该文发表在2016年第01期《中西医结合肝病杂志》上。
  乙型肝炎病毒(HBV)转基因小鼠60只,随机分为6组(模型组、正常组、荣肝合剂组、茵陈蒿汤组、茵陈组、联苯双酯组),每组10只,造模前14天,模型组、正常组小鼠给予生理盐水灌胃,其余组分别给予荣肝合剂、茵陈蒿汤、单味茵陈煎液、联苯双酯溶液,每日灌胃给药干预。末次灌胃给药后1h,正常组小鼠给予磷酸盐缓冲液(PBS)尾静脉注射,其余各组按照Con&A3&g/g体重尾静脉注射造模。造模给药后8h处死动物取血或组织标本检测丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天门冬氨酸氨基转移酶(AST)、总胆红素(TBil)、组织病理学(光镜)及T淋巴细胞亚群等指标。
  模型组各指标与正常组比较,差异均有统计学意义(P&0.05,P&0.01);与模型组比较,荣肝合剂组、联苯双酯组小鼠ALT、AST、TBil水平显著降低(P&0.01),荣肝合剂组、茵陈蒿汤小鼠组肝细胞变性、坏死及炎细胞浸润程度较轻;各药物干预组CD4~+CD8~-T淋巴细胞所占比例均有升高,以荣肝合剂最显著,有显著性差异(P&0.05);荣肝合剂组CD4~+CD8~+T淋巴细胞所占比例下降(P&0.05);各中药组均可升高CD4~+/CD8~+T细胞比例(P&0.05)。同时,荣肝合剂CD4~+CD8~-T淋巴细胞所占比例于其他药物干预组比较差异有显著性意义(P&0.05),荣肝合剂组CD4~+CD8~+T细胞所占比例与联苯双酯组比较有显著性差异(P&0.05),荣肝合剂组CD4~+/CD8~+T细胞比值与茵陈蒿汤组比较差异有显著性意义(P&0.05)。
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