苯甲酸的性质苯甲酸乙醇溶液为什么逐渐变黄?_百度作业帮
苯甲酸的性质苯甲酸乙醇溶液为什么逐渐变黄?
苯甲酸 1.物质的理化常数 别名:安息香酸 分子式 C7H6O2；C6H5COOH 外观与性状 鳞片状或针状结晶,具有苯或甲醛的臭味 分子量:122.13 蒸汽压:0.13kPa/96℃ 闪点：121℃ 熔点:121.7℃ 沸点：249.2℃ 溶解性:微溶于水,溶于乙醇、乙醚、氯仿、苯、四氯化碳 密度:相对密度(水=1)1.27；相对密度(空气=1)4.21 稳定性:稳定 主要用途:用作制药和染料的中间体,用于制取增塑剂和香料等,也作为钢铁设备的防锈剂 2.对环境的影响 一、健康危害 侵入途径：吸入、食入.健康危害：对皮肤有轻度刺激性.蒸气对上呼吸道、眼和皮肤产生刺激.本品在一般情况下接触无明显的危害性.二、毒理学资料及环境行为 急性毒性：LD502530mg/kg(大鼠经口)；2370mg/kg(小鼠经口)；500mg/kg(人经口)；人经口6mg/kg最低中毒量,可有皮肤损害.危险特性：遇高热、明火或与氧化剂接触,有引起燃烧的危险.燃烧(分解)产物：一氧化碳、二氧化碳.3.现场应急监测方法 4.实验室监测方法 色谱-质谱法《固体废弃物试验分析评价手册》中国环境监测总站等译 气相色谱法《食品中添加剂的分析方法》马家骧等译 气相色谱法(GB/T6,食品) 5.环境标准 前苏联 车间空气中有害物质的最高容许浓度 5mg/m3 6.应急处理处置方法 一、泄漏应急处理 隔离泄漏污染区,周围设警告标志,切断火源.应急处理人员戴好防毒面具,穿一般消防防护服.用清洁的铲子收集于干燥洁净有盖的容器中,运至废处理场所.如大量泄漏,收集回收或无害处理后废弃.二、防护措施 呼吸系统防护：空气中浓度超标时,戴面具式呼吸器.紧急事态抢救或撤离时,建议佩戴自给式呼吸器.眼睛防护：戴化学安全防护眼镜.防护服：穿防酸碱工作服.手防护：戴防化学品手套.其它：工作后,淋浴更衣.注意个人清洁卫生.定期体检.三、急救措施 皮肤接触：脱去污染的衣着,用大量流动清水彻底冲洗.眼睛接触：立即翻开上下眼睑,用流动清水或生理盐水冲洗.就医.吸入：迅速脱离现场至空气新鲜处.保持呼吸道通畅.呼吸困难时给输氮.呼吸停止时,立即进行人工呼吸.就医.食入：误服者漱口,给饮牛奶或蛋清,就医.灭火方法：雾状水、泡沫、二氧化碳、干粉、砂土.
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黄体酮注射液的稳定性及其在奶牛体内的药动学和牛奶中残留研究
【摘要】：
本试验研究了“不孕奶牛催乳注射液”(Ⅰ号针:黄体酮与苯甲酸雌二醇;Ⅱ号针:利血平)中黄体酮的稳定性、在奶牛体内的药物动力学特征和黄体酮在牛奶中的残留和消除规律。
1.根据《中国药典》药物稳定性指导原则及黄体酮注射液的质量标准,本次试验对供试品中黄体酮进行了加速试验、光加速试验、长期试验及经典恒温热加速试验。结果表明,本品经过加速试验和长期试验,各项指标与0月相比无明显变化,但在光加速试验条件下,黄体酮对光不稳定。经计算求得,室温25℃时黄体酮的分解速率常数K为9. min-1,其分解10%的时间为2.16年。结果显示,结合注射液中苯甲酸雌二醇和利血平的稳定性试验结果,“不孕奶牛催乳注射液”在避光、室温条件下贮存,将其有效期定为2年。
2.试验前,对奶牛进行摘除卵巢手术,术后30 d单剂量肌肉注射“不孕奶牛催乳注射液”Ⅰ号针(含黄体酮与苯甲酸雌二醇),120 h内不同时间15次颈静脉采血,用放射免疫分析法(RIA)测定血清黄体酮浓度。结果表明,黄体酮在奶牛体内的药物动力学配置属于有吸收因素二室模型,其药-时曲线方程为C=5.1t + 1.1t–6.8t。主要药物动力学参数如下:消除相半衰期(t1/2β)为(81.3)h,药时曲线下面积(AUC)为(230.5)ng·mL-1·h,达峰浓度(Cmax)为(3.798±1.083) ng/mL,达峰时间(Tmax)为(8.0±1.9)h。结果显示,黄体酮在奶牛体内分布广泛,消除缓慢。
3.对不孕奶牛注射“不孕奶牛催乳注射液”,开始产奶时间即为第1天,每天定时采集奶样至第35天,用放射免疫分析法(RIA)测定奶样中黄体酮含量。结果表明,第9天后,诱导乳与商品乳中黄体酮含量差异不显著,8 d以内的奶不能供人饮用。制定出黄体酮的弃奶期为8 d。结果显示,结合牛奶中苯甲酸雌二醇残留测定结果(弃奶期为18 d,另见苯甲酸雌二醇残留研究),为保证奶制品的安全,将“不孕奶牛催乳注射液”的弃奶期确定为18 d。
【关键词】：
【学位授予单位】：西北农林科技大学【学位级别】：硕士【学位授予年份】：2009【分类号】：S859.79【目录】：
ABSTRACT6-12
第一章 文献综述12-26
1.1 奶牛不孕症概述12-16
1.1.1 奶牛不孕症的原因12-14
1.1.2 奶牛不孕症的危害14-15
1.1.3 奶牛不孕症的防治15-16
1.2 不孕奶牛催乳技术16-18
1.2.1 “不孕奶牛催乳注射液”的成分17
1.2.2 不孕奶牛的选择条件17
1.2.3 “不孕奶牛催乳注射液”的使用方法17
1.2.4 “不孕奶牛催乳注射液”的效果17
1.2.5 “不孕奶牛催乳注射液”的不良反应17-18
1.2.6 应用“不孕奶牛催乳注射液”的注意事项18
1.3 黄体酮研究进展18-22
1.3.1 黄体酮的理化性质19
1.3.2 黄体酮的生理功能19-20
1.3.3 黄体酮在临床中的应用20-21
1.3.4 血液和乳汁中黄体酮的检测方法21-22
1.4 兽药残留概述22-26
1.4.1 兽药残留产生的原因23
1.4.2 兽药残留的危害23-24
1.4.3 兽药残留的控制措施24-26
第二章 黄体酮注射液的稳定性研究26-39
2.1 试验材料26
2.1.1 试验仪器26
2.1.2 试剂及药品26
2.2 试验方法26-28
2.2.1 检测项目26-28
2.2.2 稳定性试验28
2.3 结果与分析28-34
2.3.1 黄体酮检测波长的确定28
2.3.2 黄体酮的液相色谱图28-29
2.3.3 标准曲线的绘制29-30
2.3.4 精密度试验结果30
2.3.5 回收率试验结果30
2.3.6 黄体酮含量测定30
2.3.7 稳定性试验结果30-34
2.4 讨论34-35
2.4.1 含量测定方法中流动相的确定34
2.4.2 黄体酮注射液的稳定性34-35
2.4.3 有效期的确定35
2.5 小结35-39
第三章 黄体酮在奶牛体内的药物动力学研究39-45
3.1 试验材料39-40
3.1.1 仪器与设备39
3.1.2 试验动物39
3.1.3 试验药品与试剂39-40
3.2 试验方法40-41
3.2.1 给药方法40
3.2.2 血样采集及处理方法40
3.2.3 血清样品的测定40-41
3.3 结果与分析41-43
3.3.1 黄体酮RIA 反应剂量曲线的制作结果41
3.3.2 奶牛血清中黄体酮质量浓度的测定结果41-43
3.3.3 药物动力学参数的计算结果43
3.4 讨论43-44
3.4.1 试验动物的处理43-44
3.4.2 测定方法的选择44
3.4.3 黄体酮在奶牛体内的药物动力学特征44
3.5 小结44-45
第四章 黄体酮在牛奶中残留的研究45-51
4.1 试验材料45-46
4.1.1 试验仪器与设备45
4.1.2 试验动物45
4.1.3 主要药品与试剂45-46
4.2 试验方法46-47
4.2.1 给药与奶样采集46
4.2.2 奶样中黄体酮含量的测定46-47
4.2.3 奶牛弃奶期的确定47
4.3 结果与分析47-49
4.3.1 黄体酮 RIA 反应剂量曲线的制作结果47
4.3.2 不孕奶牛催奶成功后所泌乳汁中黄体酮含量的测定结果47-49
4.3.3 黄体酮弃奶期的确定49
4.4 讨论49-50
4.4.1 奶样的处理49
4.4.2 检测方法的选择49-50
4.4.3 奶样测定结果50
4.4.4 “不孕奶牛催乳注射液”休药期的确定50
4.5 小结50-51
参考文献52-56
作者简介57
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