将蒽酮硫酸法试剂加入到水中会有什么样的反应

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【求助/交流】蒽酮比色法测定可溶性糖
测定可溶性糖时,在葡糖糖标准液中加入蒽酮试剂后,出现了黄色絮状物质,吸光度多为负值,标线都做不出来,是什么原因造成的?应该怎么解决呢?
葡萄糖标准液中加入硫酸蒽酮后,沸水浴15 min,冰水冷却5 min,之后室温平衡10 min,再测定吸光度值。楼主具体操作是什么? 这样的事情&&如果方法没错···都是你的试剂纯度不够或者器具不净! 重新做几次,可能有污物。。。 除了上述同学说的可能外,蒽酮-硫酸溶液的量加的够么?我之前碰到过类似的问题。。。 显色剂变质了 Originally posted by guolala000 at
除了上述同学说的可能外,蒽酮-硫酸溶液的量加的够么?我之前碰到过类似的问题。。。 我是标准液5ml,硫酸蒽酮试剂5ml,这个是由标准液的葡萄糖含量决定的吗?你是怎么解决这个问题的呢? 试管中水太多了
蒽酮与糖反应的产物是深蓝色的,这种物质再遇到水后就生产黄色絮状物质 重新配置硫酸蒽酮溶液,这个必须现配现用 Originally posted by 马哈鱼 at
我是标准液5ml,硫酸蒽酮试剂5ml,这个是由标准液的葡萄糖含量决定的吗?你是怎么解决这个问题的呢? 那应该就是这个原因了,因为蒽酮溶于硫酸,不溶于水,我用76%的硫酸配的蒽酮,在葡萄糖液和硫酸蒽酮试剂比例小于1:3(还是1:4,记不清了,后来学生实验用的1:4,好计算)实验可成功,楼主1:1是不行的。葡萄糖浓度配高点,减小体积(控制反应物比例)就好了。 Originally posted by 香菱儿 at
试管中水太多了
蒽酮与糖反应的产物是深蓝色的,这种物质再遇到水后就生产黄色絮状物质 Sample TextSample Text总糖试液中加入蒽酮,煮沸10分钟后,出现深蓝色,实验中有出现这一现象,可是这样如何测得吸光度,请帮忙指导一下 Originally posted by 素素的世界 at
Sample TextSample Text总糖试液中加入蒽酮,煮沸10分钟后,出现深蓝色,实验中有出现这一现象,可是这样如何测得吸光度,请帮忙指导一下 深蓝色就对了,不要煮时间太长啊(比如超过10几分钟),时间太长就发生其他的反应了,产物的吸光度值就变了! : Originally posted by 香菱儿 at
试管中水太多了
蒽酮与糖反应的产物是深蓝色的,这种物质再遇到水后就生产黄色絮状物质 可是葡萄糖溶液里也有水呀,而且稀释的浓硫酸里也有水呀。。。。 : Originally posted by 香菱儿 at
深蓝色就对了,不要煮时间太长啊(比如超过10几分钟),时间太长就发生其他的反应了,产物的吸光度值就变了!... 我想问一下,要是煮的时间太长,会发生什么其他物质,吸光度值会变大吗?求指教啊,谢谢
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Ⅳ.&Fehling试验&Ⅴ.Benedict试验&Ⅵ.&Barfoed试验
试剂甲:称取34.5g硫酸铜溶于500mL水中。
试剂乙:称取125g NaOH 137g酒石酸钾钠溶于500mL水中,贮存于具橡皮塞玻璃瓶中。临用前,将试剂甲和试剂乙等量混合。
1%葡萄糖溶液;1%蔗糖溶液;1%淀粉溶液。
取试管,编号,各加入Fehlin试剂甲和乙1mL。摇匀后,分别加入4滴待测糖溶液,置沸中加热2 ~ 3min,取出冷却,观察沉淀和颜色变化。
Ⅴ. Benedict试验
Benedict试剂是Fehling试剂的改良。Benedict试剂利用柠檬酸作为Cu2+的络合剂,其碱性较Fehling试剂弱,灵敏度高,干扰因素少。
Benedict试剂:将170g 柠檬酸钠和100g 无水碳酸钠溶于800mL水中;另将17g硫酸铜溶于100mL热水中。将硫酸铜溶液缓缓倾入柠檬酸钠-碳酸钠溶液中,边加边搅,最后定容至 1000mL。 该试剂可长期使用。
1%葡萄糖溶液;1%蔗糖溶液;1%淀粉溶液。
取试管,编号,分别加入2mL Benedict试剂和4滴待测糖溶液,沸水浴中加热5分钟,取出后冷却,观察各管中的颜色变化。
Ⅵ. Barfoed试验
在酸性溶液中,单糖和还原二糖的还原速度有明显差异。Barfoed试剂为弱酸性。单糖在Barfoed试剂的作用下能将Cu2+还原成砖红色的氧化亚铜,时间约为3分钟,而还原二糖则需20分钟左右。所以,该反应可用于区别单糖和还原二糖。当加热时间过长,非还原性二糖经水解后也能呈现阳性反应。
Barfoed试剂:16.7g 乙酸铜溶于近200mL水中,加1.5mL冰醋酸,定容至250mL即可。
1%葡萄糖溶液;1%蔗糖溶液;1%淀粉溶液。
取试管,编号,分别加入2mL Barfoed试剂和2 ~ 3滴待测糖溶液,煮沸2-3分钟,放置20分钟以上,比较各管的颜色变化。
(1)Molish反应非常灵敏,0.001%葡萄糖和0.0001%蔗糖即能呈现阳性反应。因此,不可在样品中混入纸屑等杂物。当果糖浓度过高时,由于浓硫酸对它的焦化作用,将呈现红色及褐色而不呈紫色,需稀释后再做。
(2)果糖与Seliwanoff试剂反应非常迅速,呈鲜红色,而葡萄糖所需时间较长,且只能产生黄色至淡黄色。戊糖亦与Seliwanoff试剂反应,戊糖经酸脱水生成糠醛,与间苯二酚缩合,生成绿色至蓝色产物。
(3)酮基本身没有还原性,只有在变成烯醇式后,才显示还原作用。
(4)糖的还原作用生成氧化亚铜沉淀的颜色决定于颗粒的大小,Cu2O颗粒的大小又决定于反应速度。反应速度快时,生成的Cu2O颗粒较小,呈黄绿色;反应速度慢时,生成的Cu2O颗粒较大,呈红色。溶液中还原糖的浓度可以从生成沉淀的多少来估计,而不能依据沉淀的颜色来判断。
(5)Barfoed 反应产生的Cu2O沉淀聚集在试管底部,溶液仍为深蓝色。应注意观察试管底部红色的出现。
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易生物VIP企业推荐蒽酮比色法测定食品中的总糖及意义
来源/作者:中国标准物质网  日期: 9:39:52
(一)食品中总糖的意义
食品中含有多种糖类,食品中的总糖通常是指具有还原性的糖(葡萄糖、果糖、乳糖、麦芽糖等)和在测定条件下能水解为还原性单糖的蔗糖的总量。作为食品生产中的常规分析项目,总糖反映的是食品中可溶性单糖和低聚糖的总量,总糖的含量对产品的感官质量、组织形态、营养价值、成本等有一定影响,因此许多食品如麦乳精、糕点、果蔬罐头、饮料等的质量指标中都有总糖这一项。
食品中总糖测定方法包括直接滴定法、蒽酮比色法等。
(二)蒽酮比色法
单糖类遇浓硫酸时,脱水生成糠醛衍生物,它与蒽酮缩合成蓝绿色的化合物,当糖的量在20~200mg范围内时,其呈色强度与溶液中糖的含量成正比,故可比色定量。该法是微量法,适合于含微量碳水化合物的样品,具有灵敏度高、试剂用量少等特点。
1.标准曲线的制作
称取1.0000g葡萄糖,用水定容到1000mL,从中吸取lmL、2mL、4mL、6mL、8mL、10mL分别移入100mL容量瓶中,用水定容,即得lOmg/mL、20mg/mL、40mg/mL、60mg/mL、80mg/mL、100mg/ml,葡萄糖系列标准溶液。吸取系列标准溶液和蒸馏水各2mL,分别放入7支具塞比色管中,沿管壁各加入蒽酮试剂10mL,立即摇匀。放入沸水浴中准确加热10min,取出并迅速冷却至室温,在暗处放置10min,用1cm比色杯,以零管调零点,在620nm波长下测定吸光度,绘制标准曲线。
2.样液测定
吸取样品溶液(含糖20~80mg/mL)和蒸馏水各2mL,分别放入2支具塞比色管中,其余方法同上,测定吸光值,根据样品溶液的吸光值查标准曲线,得出含糖量。
3.结果计算
X=c*稀倍数*10-4
式中 x――样品总糖(以葡萄糖计)的质量分数,%;
c――从标准曲线查得的糖浓度,mg/mL;
10-4――将mg/mL换算为%的系数。
①10~100mg/mL葡萄糖系列标准溶液。
②0.1%蒽酮溶液:O.1g蒽酮和1.0g硫脲,溶于100mL 72%硫酸中,储存于棕色瓶中,于0~4℃下存放。
5.注意事项
①该法有几种不同的操作步骤,主要差别在于蒽酮试剂中硫酸的含量(66%~95%)、取样液量(1~5ml)、蒽酮试剂用量(5~20mL)、沸水浴中反应时间(6~15min)和显色时间(10~30min),这几个操作条件之间是有联系的,不能随意改变其中任何一个,以免影响分析结果。
②反应液中硫酸的含量高达60%以上,在此酸度条件下,于沸水浴中加热,样品中的双糖、淀粉等会发生水解,再与蒽酮发生显色反应。因此测定结果是样品溶液中单糖、双糖和淀粉的总量。
③蒽酮试剂不稳定,易被氧化变为褐色。一般蒽酮试剂应现用现配,加入硫脲是作为稳定剂,在冷暗处可保存48h。
④本法要求控制条件严格,防止误差出现,同时要求样品溶液必须清澈透明,加热后不应有蛋白质沉淀,如样品溶液色泽较深,可用活性炭脱色。&#xe602; 下载
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