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【翻译】中翻英，求各位英语大神帮帮忙，感激不尽收藏
有一篇做英语课堂presentation的文章，只可惜我上大学后英语许久不碰连一些语法都忘记了，然后文章虽然写出来了，但是实在搞不定英文求助各路大神帮助，实在感激不尽对于文章逻辑思路有哪里不对，尽管说出来，我虚心受教再次感激不尽
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文章如下，有点长，麻烦了！第一天当你进入大学，一切都是如此的新鲜。那么对于接下的大学生活，你最期待的是什么呢？对于我来说，最新鲜的莫过于要开始宿舍生活。事实上，对于很多人来说，宿舍生活都是一个新奇且使人好奇的体验，试想一下，宿舍它让来自不同地方在之前对彼此毫无了解的几个人从此朝夕相处，而在这里会发生许许多多的故事。那么是否大学生就必须要住宿舍呢？基本在国内的所有大学都是需要住宿舍的，因为很多学生都不是大学本地的，在异地要自己出去找房子住的话对于还没有经济收入的大学生来说是有一定的难度的，从这个角度来说，上大学就要住大学宿舍是毫无疑问的，而我想另一个客观的原因也是为了学校更加方便管理。不过，宿舍是群体生活，群体之间存在着差异，所以群体生活就预示了会有很多的摩擦。比如从作息习惯上可能每个人都有不同的习惯，这可能会导致了彼此会影响到生活作息，有太多太多的大学生抱怨自己反感宿舍生活的最大原因就是舍友作息习惯影响到了自己的正常休息。因为有差异会导致摩擦，那么这样看来似乎导致缺点的原因是宿舍安排出了问题，我们应该要求学校将作息时间一致的人安排在同一个宿舍！不过遗憾的是，目前来说这种做法基本是无法实现的，不过关于把兴趣相同的人安排在一起倒是有可能，因为在国外很多大学会让学生在入学之前填一张兴趣爱好表，里面甚至也会包括一些关于生活习惯的问题，之后校方会根据这张表来安排学生的宿舍。大家对于这样的宿舍安排方式是否喜欢呢？这样的话，兴趣相同、生活习惯类似，甚至喜欢同一种事物的舍友！听起来是不是棒极了！可能的话，家庭经济基础相似也会被许多人提上宿舍的安排根据表上，为什么这样说呢？因为最近太多的大学生悲剧里，都似乎在揭示一个事情，同一个宿舍的人经济基础的差异也会导致现在很多的大学生心理问题的出现，这个说法让我也觉得很世故很无奈，可是很多的数据和对大学生的心理问题调查都显示了这一个结果。这样看来，宿舍安排实际上很大程度上决定了你的大学生活的幸福程度，如何寻找与自己匹配的舍友似乎是很重要的，在我们学校，现在大部分是根据专业来分配宿舍的，这样的话更容易增强一个班级的凝聚力。但是还是有很多的人希望校方能够根据个人兴趣、生活习惯来安排宿舍。曾经网上有一句话很流行，这句话是这样说的“一直觉得学校里最神圣的职业是为学生安排宿舍，他们不经意之间决定了很多人这一生最好的朋友是谁”，我很同意这句话。想起了我的宿舍，我有三个兴趣、爱好，甚至生活作息都和我完全迥异的舍友。但是我们关系非常好，而且从他们身上我学到了很多可能我自己一辈子都不会知道的新鲜事，在刚开始我们也会有磨合期，但是因为有一颗包容的心，我们现在都是彼此最好的朋友！记得我们其他同学评论我们宿舍总会说“天呐，你们四个真是个性迥异，没想到你们关系能够那么好”。所以对于我来说，我还是更喜欢随机性的宿舍安排方式，因为这样的选择，代表了更多的可能性。而面对宿舍生活的未知性，我觉得只要我们包含着一颗宽容的心，就会有发现更多美好的可能性！
因为是不写出来的，是我说出来的可以口语化一点，不用太复杂的感谢感谢~
如果各位大神觉得太长的话，帮我翻译其中一段也是可以的谢谢了
不会就这样沉掉吧以后一定好好学英语了
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Transduction of DCs with the GPC3 gene.
& && && &&&The recombinant plasmid green fluorescent protein (pGFP)‑GPC3 eukaryotic expression vector was constructed and maintained at the Key Laboratory for Critical Care Medicine of the Ministry of Health (Tianjin, China). Briefly, the pDONR223‑GPC3 plasmid (full length GPC3 cDNA) was ligated into a pcDNA‑DEST53 vector containing GFP (Invitrogen Life Technologies) with recombinase. The recombinant pGFP‑GPC3 was amplified in E. coli DH5α competent cells and isolated with Takara MiniBEST plasmid purification kit (Takara Bio, Inc., Otsu, Japan). The correct pGFP‑GPC3 plasmid sequence was verified using DNA analysis. The DCs were transduced using the Amaxa® Nucleofector® apparatus (Lonza Cologne GmbH, Cologne, Germany), according to the manufacturer's instructions. Briefly, on day 6, 5x106 immature DCs were cultured in serum‑free growth medium (Gibco Life Technologies) without antibiotics prior to nucleofection. The cells were gently resuspended in 100 μl human electroporation buffer (Lonza Cologne GmbH) at a concentration of 2x106 cells/100 μl and then transferred to a sterile Amaxa® nucleofection cuvette (Lonza Cologne GmbH). Subsequently, the immature DCs were incubated with 2 μg pEGFP‑GPC3 or empty vector containing GFP. The cells were electroporated using of the appropriate nucleofection program (as recommended in the manufacturer's instructions) and immediately transferred into six‑well plates containing fresh pre‑warmed culture medium at 37˚C with the necessary cytokine (TNF‑α) and serum. DCs were incubated at 37˚C for 24 h to induce maturation and were termed as the DCs‑GPC3 group. DCs transduced with pcDNA3 (DC‑pcDNA3) were used as the control group. After 24 h of incubation, DCs‑GPC3 viability was assessed using trypan blue exclusion (Sigma‑Aldrich) and the transfection efficiency of the cells was assessed by the extent of GFP expression using Ni‑U fl uorescence microscopy (Nikon Corporation, Tokyo, Japan) and fluorescence‑activated cell sorting (FACS) fl ow cytometric analysis was performed using a FACSCalibur flow cytometer (BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA). The DCs were then collected for subsequent experiments.
& && && & GPC3 expression in DCs‑GPC3. The expression of GPC3 in DCs‑GPC3 was detected at the transcriptional and translational levels. Following transfection for 48 h, DCs‑GPC3 were collected and the total RNA or total protein was prepared for detection by TaqMan reverse transcription‑polymerase chain reaction (RT‑PCR) or western blotting, respectively. Non‑transduced mature DCs and DCs‑pcDNA3 were evaluated in parallel as controls. Primer Premier V5.0 software was used to design the primers according to human gene sequences (GenBank database,
Primers were synthesized by Integrated DNA Technologies (Coralville, IA, USA). The PCR primers used for GPC3 were as follows: forward, 5'‑AGA GGC CTT TGA AAT TGT‑3', and reverse 5'‑AAA TAC TTT CAG GTC ACG TC‑3'; and the probe 5'‑FAM‑ATG CCA AGA ACT ACA CCA ATG CTA MRA‑3' (22). The conditions for each PCR reaction were as follows: 15 min at 95˚C, followed by 40 cycles of denaturation for 20 sec at 95˚C and annealing/extension for 60 sec at 60˚C. The level of expression was represented as 2‑ΔCt, where ΔCt was calculated as: (copy number of target molecule)/(copy number of β‑actin). For western blot analysis, the proteins were resolved on an SDS denaturing polyacrylamide gel and then transferred onto nitrocellulose membranes (EMD Millipore, Billerica, MA, USA). A primary rabbit anti‑human polyclonal antibody to GPC3 (sc&#; 1:500) or an endogenous control β‑actin (sc&#; 1:500) were incubated with the membranes first and then with horseradish peroxidase‑conjugated goat anti‑rabbit IgGFc secondary antibodies (sc&#; 1:2,000) (All antibodies from Santa Cruz Biotechnology Inc., Santa Cruz, CA, USA). Protein expression was assessed by enhanced chemiluminescence (EMD Millipore), and the bands were captured using a FluorChem FC2 Imaging System (ProteinSimple, San Jose, CA, USA).
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