什么叫积分时间常数数

1在直流电压作用下,RLC串联电路的暂态过程有什么特点?2时间常数的物理意义是什么?如何测RC串联电路的时间常数?_作业帮
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1在直流电压作用下,RLC串联电路的暂态过程有什么特点?2时间常数的物理意义是什么?如何测RC串联电路的时间常数?
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1、过阻尼的情况下,电压电流都是一个由0上升,无限趋近稳态值的过程;欠阻尼的情况,则是一个震荡的过程,并无限趋近稳态值2、时间常熟,反应达到稳态的快慢程度.用示波器测得波形后计算,或是单独根据各电器参数计算.直流电机的电磁时间常数和机电时间常数计算公式是什么?_百度知道
直流电机的电磁时间常数和机电时间常数计算公式是什么?
  电磁时间常数= 电感/电阻以永磁同步马达为例:定子线圈电感 = 1.3 mH,电阻=0.039 Ohm那么:电磁时间常数=1.3 / 0.039 = 33 ms  电机的机电时间常数也叫机械时间常数,控制上其计算公式为  电机有两个时间常数:机电时间常数Tm和电气时间常数Te。通常Tm&&Te,这种情况下电机的传递函数可看作两个惯性环节的串联,两个惯性环节的时间常数就分别是Tm和Te,而对于一般的应用,由于Te很小,对应的惯性环节可以忽略不计,于是电机的传函就简化为:1/(Tm*s+1)。对于这样一个惯性环节,其阶越响应为:  在阶越发生后Tm时刻,其输出即为0.632.
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机电时间常数为:Ts=Ls&#47.632倍额定值得时间;&(375*CeCm),Ts&lt.632倍额定值得时间;一般;R电磁时间常数为;Tm:Tm=GD^2&#47,表征电机转速从从0升至0,表征电枢电流从0升至0
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出门在外也不愁rc电路时间常数实验原理是什么啊?
rc电路时间常数实验原理是什么啊?
09-10-28 &匿名提问 发布
积分电路可将矩形脉冲波转换为锯齿波或三角波,还可将锯齿波转换为抛物波。都是基于电容的冲放电原理,这里就不详细说了,这里要提的是电路的时间常数R*C,构成积分电路的条件是电路的时间常数必须要大于或等于10倍于输入波形的宽度。
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关闭特色百科用户权威合作手机百科 收藏 查看&浓度时间常数本词条缺少信息栏、名片图,补充相关内容使词条更完整,还能快速升级,赶紧来吧!
当某个电路含有电容器,在闭合电路时,电流不会立即达到稳定状态。如果电路的电容量是为C(F),电阻为R(Ω),那么经过CR时间(单位为S),电容器上的电压达到最终值的(1-1/e)倍,即0.63倍。等于CR的这段时间称为该电路的时间常数。当药物浓度为0.5\%时,可以使大鼠心肌细胞IKI内向成分降低,使-100mV时IKI电流密度从(-10.78±1.80)pA/pF降至(-7.18±2.05)pA/pF,平均抑制率为(33.1±16.85)\%(n=11,P&,0.05),但不改变电流的翻转电位及整流特性。药物同时对Ito电流的瞬时成分有抑制作用,当60mV时,Ito电流密度从(-17.13±8.04)pA/pF降至(-7.74±4.76)pA/pF,平均抑制率为(50.60±10.77)\%(n=6,P&,0.05),稳态失活曲线左移,失活后恢复时间常数增大。当药物浓度为0.5\%时,对IK有电压依赖性抑制作用,当50mV时对尾电流峰值的抑制率为(30.77±1.11)\%(n=5,P&,0.05)。 为避免电流衰减(rundown)现象的影响,电极内液中加入ATP,并控制实验在细胞破膜后25分钟内完成。根据实验设计,将配制好的药物溶液,用恒流蠕动泵以2ml/分钟速度向细胞灌流槽分别灌流,同时使用整负压吸引装置将废液从灌流槽中吸除。记录方法为破膜后稳定5分钟记录给药前的电流值,给药5分钟后记录药物作用下的电流值。采样后数据存贮在电脑硬盘内,供测量及分析用。为消除细胞间误差,电流值以电流密度(pA/pF)表示。
用急性酶解法制备心室肌单个细胞。取大鼠用50mg/kg戊巴比妥钠腹腔注射麻醉后,开胸取出心脏,在4℃无钙Tyrode液中去除脂肪和心包膜,分离主动脉并插管,行Langendorff心脏灌流(图1),速度为6~8ml/min。先以无钙台氏液灌流3分钟(灌注压为20cm水柱),洗净冠脉内血液,再用低钙酶解液(CaCl2为0.05mmol/L低钙台氏液,含Ⅱ型胶原酶0.4mg/ml,链蛋白酶E0.04mg/ml)循环灌流,大约20分钟后,将心脏从Langendorff装置上取下,置入室温KB液中,剪去心房和基底部的组织,持眼科镊将心室组织轻轻撕拉,用粗开口的吸管缓慢吹打,使心肌细胞从心肌组织上脱离,获得单个心室肌细胞,上清液用120目的尼龙过滤网过滤,心肌细胞收藏在含KB液的试管中。整个灌流系统温度保持在37℃,所有的灌流液和KB液均通以100\%的O2饱和30分钟以上。将细胞在室温下静置半小时左右复钙至0.25mmol/L,室温保存备用。
吸取少许富含细胞的KB悬液于0.5ml的灌流槽中,静置5~10分钟,待细胞沉底附壁后,用100\%O2饱和的细胞外液实验前吸取少许富含细胞的KB悬液于0.5ml的灌流槽中,静置5~10分钟,待细胞沉底附壁后,用100\%O2饱和的细胞外液进行表面灌流5~10分钟,流速约2ml/分钟。在倒置显微镜(OLYMPUS1×70)下选择边缘清楚、表面光滑、横纹清晰、无收缩的细胞。实验在22~24℃室温下进行。采用Hamill等人的标准全细胞膜片钳记录方法,在电压钳制模式下记录通道电流。膜片钳放大器(Axopatch700B,美国Axon公司),通过A/D和D/A数据转换器(Digidata1322,美国Axon公司)同计算机相连接。刺激信号及电压、电流输入信号的采集均由软件(pClampex10.0,美国Axon公司)控制。玻璃毛胚管(中国科学院物理所提供)经微电极拉制仪(p-97,美国Sutter公司)进行4步拉制而成,经抛光仪(MF-830,日本Narishige公司)抛光后尖端直径2~3μm。充灌电极内液后入水电阻为1.5~3MΩ,补偿液接电位后,调节三维操纵器(mhw-3,日本NARISHIGE公司)使电极尖端移向细胞表面,形成高阻封接(gigaseal),封接电阻为1GΩ以上。补偿快电容并吸破细胞膜形成全细胞记录模式。电容测定时给予-10mV跃阶的刺激,采用Cm=τ·Iss/△V求膜电容。调节慢电容补偿和串联电阻补偿80\%~90\%以减少瞬时充放电电流和钳位误差。信号经截止频率为1kHz的4阶贝塞尔低通滤波器,采样率为10kHz。
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