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【求助】为什么我的SDS－PAGE电泳时电泳缓冲液变浑浊呢？
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请各位帮忙指点一下，我以前做过几次从来没有遇见过这个问题。但这几次在跑胶时电泳缓冲液在电泳大约30min后就开始变浑浊了。后来想可能是缓冲液PH或甘氨酸不对就又重新配了，好一点，但时间长了还是变浑浊。我的10X缓冲液是PH8.8的。查看完整版本请点击这里：
mamamiya ( 17:20:57)
我的也有这种情况
5*不是说buffer的浓度吧？
bamboo16 ( 17:21:25)
可能是电压太大了，我也曾出现这种情况！
yes4 ( 17:23:46)
我也遇到过，原因还不清楚，但是重新配置后就没有这种问题了，因此我怀疑原因可能如下：
1. Buffer中离子浓度过大，甘氨酸或者Tris碱有可能疏忽多加了
2.没有加相应浓度的SDS
3.电泳周围温度高，也是一个原因
我用这个配方就没有问题了（如下）：
5×电泳Buffer
Tris碱 15.1g
最后去离子水稀释到1000ml
H2O ( 17:24:20)
不会用5*的buffer跑吧?我们通常都用的是1*的
yonger ( 17:24:42)
环境温度低。sds析出。温水浴就没此现象。
15-20度即可。
shenkunjie ( 17:25:05)
谢谢各位！的我电泳液新配了，而且确定各种试剂的量应该是没有错了，但还没有注意过温度的原因，因前些日子是夏天做的，我都是放冰上电泳了。下次注意一下温度！
不知道楼上有没有跑大分子量的。我要测一个分子量在220KD的蛋白，不知道选用多大浓度的分离胶效果好一些，也不知道那家公司有这么大分子量的Marker?电泳时还有什么要注意的地方吗？
utt0989 ( 17:25:44)
环境温度低。sds析出。温水浴就没此现象。
15-20度即可。
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这个可能性不大，电泳时溶液的温度本就不低。
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琼脂糖凝胶电泳分离核酸时，在上样缓冲液中加指示剂的作用有（)
A．增加上样比重
B．提供颜色反应，便于操作
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琼脂糖凝胶电泳分离核酸时，在上样缓冲液中加指示剂的作用有（&&)&&A．增加上样比重&&B．提供颜色反应，便于操作&&C．指示电泳迁移过程&&D．直接指示核酸的泳动位置&&E．在紫外线的激发下可发出荧光
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